Gruźlica - diagnostyka

Informacje ogólne

  • Poniżej przedstawiono kryteria rozpoznania gruźlicy wraz ze szczegółowym opisem poszczególnych metod badań
    • więcej infromacji - patrz artykuł: Gruźlica
  • Diagnostyka mikrobiologiczna gruźlicy wymaga połączenia kilku metod równocześnie
    • u każdego pacjenta z podejrzeniem gruźlicy należy badać ≥2 próbki materiału i wykonać badanie genetyczne na obecność prątków wraz z określeniem ich lekooporności

Kryteria rozpoznania

  • Rozpoznanie gruźlicy nastręcza niekiedy problemów - wymaga często wykluczenia innych rozpoznań
  • Rozpoznanie pewne:
    • identyfikacja uwidocznionej w bakterioskopii M. tuberculosis metodami molekularnymi - lub -
    • wzrost M. tuberculosis w posiewie materiału
  • Kryteria rozpoznania bez potwierdzenia bakteriologicznego:
    • typowe zmiany w badaniach obrazowych (HRCT)
    • brak poprawy po szerokospektralnych antybiotykach (z wyjątkiem fluorochinolonów)
    • ujemne wyniki wszystkich badań bakteriologicznych

Badanie w kierunku utajonego zakażenia prątkiem gruźlicy (latent tuberculosis infection, LTBI)

  • Obecnie do wykrywania gruźlicy utajonej służą tuberkulinowe próby skórne (THT) metodą Mendla-Mantoux i testy oparte na pomiarze uwalniania interferonu-gamma we krwi (Interferon-Gamma Release Assay, IGRA)
    • u osób dorosłych zaleca się stosowanie wyłącznie testu IGRA z krwi
    • ze względu na brak dowodów na wiarygodność testów IGRA u dzieci w wieku poniżej 5 lat, tuberkulinowa próba skórna (THT) pozostaje testem z wyboru w tej grupie wiekowej; u starszych dzieci można stosować oba testy
  • Diagnostyka w kierunku latentnego zakażenia Mycobacterium tuberculosis u osób wcześniej leczonych z powodu gruźlicy nie jest celowa1

Skórna próba tuberkulinowa (OT)

  • Próba tuberkulinowa (OT, inaczej próba Mantoux) polega na śródskórnym podaniu tuberkuliny (oczyszczony preparat białkowy uzyskiwany z hodowli prątków gruźlicy) w środkową trzecią część grzbietowej strony przedramienia. Następnie ocenia się powstanie odczynu w miejscu podania po 48–72 h od wykonaniu testu. Zalecana dawka: 2 T.U./0,1ml.
  • Interpretacja badania
    • wynik ujemny: średnica odczynu miejscowego wynosi 0–5 mm
    • wynik dodatni: średnica odczynu miejscowego wynosi 6–14 mm (w Polsce niektóre źródła wynik dodatni traktują odczyn ≥10 mm)
      • zakażenie kompleksem Mycobacterium 
      • zakażenie prątkami niegruźliczymi
      • zaszczepienie szczepionką BCG (wynik dodatni pojawia się zwykle 4–8 tygodni po zaszczepieniu)
    • wynik silnie dodatni: średnica odczynu miejscowego wynosi >15 mm
      • bardzo wysokie prawdopodobieństwo zakażenia M. tuberculosis
  • Cel:
    1. Diagnostyka utajonego zakażenia prątkami gruźlicy
    2. Badanie pomocnicze w rozpoznawaniu gruźlicy
    3. Ocena odpowiedzi po szczepieniu BCG lub próba wykonywana przed szczepieniem BCG - obecnie wykonywana bardzo rzadko
  •  Trafność
    • mogą wystąpić zarówno wyniki fałszywie dodatnie, jak i fałszywie ujemne
      • czułość: ok. 80 %
      • swoistość: ok. 70 %2
    • zwiększone ryzyko wyników fałszywie ujemnych:
      • zakażenie HIV
      • terapia lekami immunosupresyjnymi
      • wiek powyżej 60 lat i poniżej 3 miesięcy
      • niedożywienie
      • aktywne infekcje wirusowe, takie jak odra, grypa, ospa wietrzna
      • aktywne zakażenie świerzbowcem
      • sarkoidoza
      • pacjenci z ciężką, zagrażającą życiu gruźlicą
      • nowo zakażone osoby w okresie inkubacji („faza przedalergiczna“)
      • okres do 6 tygodni od podania szczepienia zawierającego żywe wirusy (przeciw MMR, ospie wietrznej)
    • zwiększone ryzyko wyników fałszywie dodatnich:

Badanie IGRA (interferon-gamma release assay) - test wydzielania interferonu γ przez limfocyty T

  • Mierzy odpowiedź immunologiczną (poprzez ilościowy pomiar wydzielanego interferonu gamma) limfocytów T na antygeny M. tuberculosis. Główną zaletą jest brak wpływu wcześniejszego szczepienia BCG na wynik oraz wysoka swoistość badania.
  • IGRA wykrywa zakażenie M. tuberculosis zarówno w przypadku gruźlicy utajonej, jak i podejrzenia gruźlicy aktywnej
  • Komercyjnie dostępne są dwa badania krwi (wykrywanie interferonu metodą ELISA i ELISPOT), które w różny sposób mierzą nasilenie uwalniania przez limfocyty T interferonu gamma po ekspozycji na antygeny ESAT-6 i/lub CFP-10. Są to testy uwalniania interferonu gamma z wykorzystaniem antygenów kodowanych przez geny regionu RD1.
  • Epidemiologia kliniczna
    • swoistość jest znacznie wyższa (98–99%) niż w przypadku próby tuberkulinowej (OT), ponieważ IGRA różnicuje zakażenie M. tuberculosis complex z zakażeniem NTM (prątkami niegruźliczymi) oraz z kontaktem z antygenami szczepionki BCG
    • czułość IGRA jest szacowana w badaniach na 70–97%, ale różni się w zależności od zastosowanego testu i badanej populacji3
      • zakłada się, że czułość IGRA jest co najmniej tak wysoka jak OT

Diagnostyka obrazowa

RTG

  • RTG klatki piersiowej
    • konieczne wykonanie badania w dwóch płaszczyznach
    • typowy obraz:
      • gruźlica pierwotna: zagęszczenia w środkowych i dolnych polach płucnych, powiększenie węzłów chłonnych wnęk i przytchawiczyc
      • gruźlica popierwotna: zagęszczenia (mogą występować jako jamy) w segmentach szczytowych i tylnych górnych płatów płuc oraz w segmentach górnych płatów dolnych, gruźliczaki lub serzaki (cienie okrągłe)
    • zmiany mogą być nietypowe w stanach immunosupresji

Tomografia komputerowa

  • TK klatki piersiowej
    • cechuje się większą czułością i swoistością w porównaniu do badania RTG
    • wykrywa także zmiany opłucnej
    • zmiany typowe: charakterystyczne wzmocnienie obrączkowate brzeżne węzłów chłonnych po dożylnym podaniu środka kontrastowego
  • HRCT (tomografia klatki piersiowej wysokiej rozdzielczości)
    • zmiany typowe: zewnątrzzrazikowe guzki (w przypadku prosówki), wewnątrzzrazikowe guzki z linijnymi zacienieniami tworzyć (obraz „drzewa w pączkach” - typowy)
  • Diagnostyka innych okolic w przypadku podejrzenia gruźlicy pozapłucnej (szczegółowe informacje można znaleźć w artykule: Gruźlica)

Diagnostyka bakteriologiczna

Pobieranie próbek 

  • Materiał do badania
    • najczęściej:
      • plwocina, wydzielina oskrzelowa lub tchawicza
    • rzadziej:
      • popłuczyny żołądkowe
      • mocz
      • płyn z jamy opłucnowej
      • płyn mózgowo-rdzeniowy
      • materiału z innych nakłuć lub biopsji, np. powiększonych węzłów chłonnych, moczowodu, jelita, stawów
  • Posiew w kierunku prątków trzech próbek plwociny
    • największą wartość diagnostyczną posiada próbka pobrana z pierwszej porannej plwociny
    • pacjenci powinni odkrztusić śluz z oskrzeli (nie z jamy ustnej)
      • próbki pobiera się przez 3 kolejne dni
      • w razie potrzeby kaszel można indukować inhalacją hipertonicznego roztworu soli fizjologicznej (dostępne są roztwory 3% lub 4,8%)

Mikroskopia

  • Szybka metoda
  • Preparat bezpośredni
  • W 50–80% przypadków gruźlicy, potwierdzonych dodatnim wynikiem hodowli, kwasooporne prątki można rozpoznać już w badaniu mikroskopowym próbki
  • Brak możliwości bezpośredniego rozróżnienia między prątkiem gruźlicy a innymi prątkami - wymaga potwierdzenia w hodowli

Posiew bakteryjny

  • Namnażanie się drobnoustrojów w płynnym podłożu hodowlanym (na pożywkach Löwensteina i Jensena lub nowoczesnych podłożach hodowlanych) można zaobserwować po upływie 7–21 dni4
  • Wynik posiewu jest ujemny u 15–20% chorych na gruźlicę płuc 5, a u dzieci odsetek wyników fałszywie ujemnych jest często znacznie wyższy
  • Możliwe określenie oporności prątków
  • Okres inkubacji
    • podłoża płynne: ≤6 tygodni
    • podłoża stałe: ≤8 tygodni

Metody biologii molekularnej

  • Zwykle stosuje się test amplifikacji kwasu nukleinowego (nucleic acid amplification test, NAT), głównie metodą PCR (Xpert MTB/RIF)
  • Ze względu na możliwość wykrycia materiału genetycznego martwych prątków możliwy jest dodatni wynik u osoby po leczeniu gruźlicy. Z tego samego powodu nieprzydatna do monitorowania przebiegu choroby.
  • Wysoka czułość i swoistość wykrywania prątków gruźlicy w plwocinie.
    • w przypadku próbek mikroskopowo ujemnych czułość wynosi jednak jedynie 80–90%
    • w każdym przypadku wymagane jest wykonanie posiewu bakteryjnego
  • Metoda ta pozwala uzyskać wynik w ciągu godziny i przy jej użyciu można również wykryć oporność na ryfampicynę
  • WHO wspiera finansowo stosowanie technologii PCR, aby rozpowszechnić ją również w krajach znajdujących się w niekorzystnej sytuacji ekonomicznej6
  • Metody sekwencjonowania DNA do typowania molekularnego patogenu („DNA fingerprinting“) nie są rutynowo stosowane, ale mogą dostarczyć cennych informacji epidemiologicznych na temat łańcucha zakażeń

Źródła

Piśmiennictwo

  1. Podlasin RB, Thompson M. Gruźlica. W: Zasady opieki nad osobami zakażonymi HIV. Zalecenia PTN AIDS. 206-217. www.ptnaids.pl
  2. Stout JE, Wu Y, Ho CS et al. Evaluating latent tuberculosis infection diagnostics using latent class analysis. Thorax 2018; 73(11): 1062-1070. PMID: 29982223 PubMed
  3. Pai M, Zwerling A, Menzles D. Systematic review: T-cell-based assays for the diagnosis of latent tuberculosis infection: an update. Ann Intern Med 2008;149(3):177-84. www.ncbi.nlm.nih.gov
  4. Morgan MA, Horstmeier CD, DeYoung DR, Robers GD. Comparison study of a radiometric method (BACTEC) and conventional culture media for recovery of mycobacteria from smear-negative specimens. J Clin Microbiol 1983; 18: 384-88. PubMed
  5. American Thoracic Society, Centers for Disease Control and Prevention. Diagnostic standards and classification of tuberculosis in adults and children. Am J Respir Crit Care Med 2000; 161: 1376-95. PubMed
  6. WHO: Global tuberculosis report 2018, Stand 18.9.2018. www.who.int
  7. Korzeniewska-Koseła M, Iwona Grzelewska-Rzymowska I, Katarzyna Kruczak, Zofia Zwolska, Ewa Augustynowicz-Kopeć.K, et al. Gruźlica. Mp Data aktualizacji: 10 sierpnia 2023. www.mp.pl

Autorzy

  • lek. Natalia Jagiełła, (redaktor)
  • Sławomir Chlabicz; Dr hab. n. med. Prof.; specjalista medycyn rodzinnej; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (redaktor)
  • Anna Grzeszczuk; Prof. dr hab. n. med.; specjalista chorób zakaźnych; Klinika Chorób Zakaźnych i Neuroinfekcji; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (recenzent)
  • Thomas M. Heim, Dr n. med.; dziennikarz naukowy; Fryburg

Link lists

Authors

Previous authors

Updates

Gallery

Snomed

Click to edit