Informacje ogólne
- Poniżej przedstawiono kryteria rozpoznania gruźlicy wraz ze szczegółowym opisem poszczególnych metod badań
- więcej infromacji - patrz artykuł: Gruźlica
- Diagnostyka mikrobiologiczna gruźlicy wymaga połączenia kilku metod równocześnie
- u każdego pacjenta z podejrzeniem gruźlicy należy badać ≥2 próbki materiału i wykonać badanie genetyczne na obecność prątków wraz z określeniem ich lekooporności
Kryteria rozpoznania
- Rozpoznanie gruźlicy nastręcza niekiedy problemów - wymaga często wykluczenia innych rozpoznań
- Rozpoznanie pewne:
- identyfikacja uwidocznionej w bakterioskopii M. tuberculosis metodami molekularnymi - lub -
- wzrost M. tuberculosis w posiewie materiału
- Kryteria rozpoznania bez potwierdzenia bakteriologicznego:
- typowe zmiany w badaniach obrazowych (HRCT)
- brak poprawy po szerokospektralnych antybiotykach (z wyjątkiem fluorochinolonów)
- ujemne wyniki wszystkich badań bakteriologicznych
Badanie w kierunku utajonego zakażenia prątkiem gruźlicy (latent tuberculosis infection, LTBI)
- Obecnie do wykrywania gruźlicy utajonej służą tuberkulinowe próby skórne (THT) metodą Mendla-Mantoux i testy oparte na pomiarze uwalniania interferonu-gamma we krwi (Interferon-Gamma Release Assay, IGRA)
- u osób dorosłych zaleca się stosowanie wyłącznie testu IGRA z krwi
- ze względu na brak dowodów na wiarygodność testów IGRA u dzieci w wieku poniżej 5 lat, tuberkulinowa próba skórna (THT) pozostaje testem z wyboru w tej grupie wiekowej; u starszych dzieci można stosować oba testy
- Diagnostyka w kierunku latentnego zakażenia Mycobacterium tuberculosis u osób wcześniej leczonych z powodu gruźlicy nie jest celowa1
Skórna próba tuberkulinowa (OT)
- Próba tuberkulinowa (OT, inaczej próba Mantoux) polega na śródskórnym podaniu tuberkuliny (oczyszczony preparat białkowy uzyskiwany z hodowli prątków gruźlicy) w środkową trzecią część grzbietowej strony przedramienia. Następnie ocenia się powstanie odczynu w miejscu podania po 48–72 h od wykonaniu testu. Zalecana dawka: 2 T.U./0,1ml.
- Interpretacja badania
- wynik ujemny: średnica odczynu miejscowego wynosi 0–5 mm
- wynik dodatni: średnica odczynu miejscowego wynosi 6–14 mm (w Polsce niektóre źródła wynik dodatni traktują odczyn ≥10 mm)
- zakażenie kompleksem Mycobacterium
- zakażenie prątkami niegruźliczymi
- zaszczepienie szczepionką BCG (wynik dodatni pojawia się zwykle 4–8 tygodni po zaszczepieniu)
- wynik silnie dodatni: średnica odczynu miejscowego wynosi >15 mm
- bardzo wysokie prawdopodobieństwo zakażenia M. tuberculosis
- Cel:
- Diagnostyka utajonego zakażenia prątkami gruźlicy
- Badanie pomocnicze w rozpoznawaniu gruźlicy
- Ocena odpowiedzi po szczepieniu BCG lub próba wykonywana przed szczepieniem BCG - obecnie wykonywana bardzo rzadko
- Trafność
- mogą wystąpić zarówno wyniki fałszywie dodatnie, jak i fałszywie ujemne
- czułość: ok. 80 %
- swoistość: ok. 70 %2
- zwiększone ryzyko wyników fałszywie ujemnych:
- zakażenie HIV
- terapia lekami immunosupresyjnymi
- wiek powyżej 60 lat i poniżej 3 miesięcy
- niedożywienie
- aktywne infekcje wirusowe, takie jak odra, grypa, ospa wietrzna
- aktywne zakażenie świerzbowcem
- sarkoidoza
- pacjenci z ciężką, zagrażającą życiu gruźlicą
- nowo zakażone osoby w okresie inkubacji („faza przedalergiczna“)
- okres do 6 tygodni od podania szczepienia zawierającego żywe wirusy (przeciw MMR, ospie wietrznej)
- zwiększone ryzyko wyników fałszywie dodatnich:
- zakażenie prątkami niegruźliczymi (NTM)
- wcześniejsze szczepienie BCG
- mogą wystąpić zarówno wyniki fałszywie dodatnie, jak i fałszywie ujemne
Badanie IGRA (interferon-gamma release assay) - test wydzielania interferonu γ przez limfocyty T
- Mierzy odpowiedź immunologiczną (poprzez ilościowy pomiar wydzielanego interferonu gamma) limfocytów T na antygeny M. tuberculosis. Główną zaletą jest brak wpływu wcześniejszego szczepienia BCG na wynik oraz wysoka swoistość badania.
- IGRA wykrywa zakażenie M. tuberculosis zarówno w przypadku gruźlicy utajonej, jak i podejrzenia gruźlicy aktywnej
- Komercyjnie dostępne są dwa badania krwi (wykrywanie interferonu metodą ELISA i ELISPOT), które w różny sposób mierzą nasilenie uwalniania przez limfocyty T interferonu gamma po ekspozycji na antygeny ESAT-6 i/lub CFP-10. Są to testy uwalniania interferonu gamma z wykorzystaniem antygenów kodowanych przez geny regionu RD1.
- Epidemiologia kliniczna
- swoistość jest znacznie wyższa (98–99%) niż w przypadku próby tuberkulinowej (OT), ponieważ IGRA różnicuje zakażenie M. tuberculosis complex z zakażeniem NTM (prątkami niegruźliczymi) oraz z kontaktem z antygenami szczepionki BCG
- czułość IGRA jest szacowana w badaniach na 70–97%, ale różni się w zależności od zastosowanego testu i badanej populacji3
- zakłada się, że czułość IGRA jest co najmniej tak wysoka jak OT
Diagnostyka obrazowa
RTG
- RTG klatki piersiowej
- konieczne wykonanie badania w dwóch płaszczyznach
- typowy obraz:
- gruźlica pierwotna: zagęszczenia w środkowych i dolnych polach płucnych, powiększenie węzłów chłonnych wnęk i przytchawiczyc
- gruźlica popierwotna: zagęszczenia (mogą występować jako jamy) w segmentach szczytowych i tylnych górnych płatów płuc oraz w segmentach górnych płatów dolnych, gruźliczaki lub serzaki (cienie okrągłe)
- zmiany mogą być nietypowe w stanach immunosupresji
Tomografia komputerowa
- TK klatki piersiowej
- cechuje się większą czułością i swoistością w porównaniu do badania RTG
- wykrywa także zmiany opłucnej
- zmiany typowe: charakterystyczne wzmocnienie obrączkowate brzeżne węzłów chłonnych po dożylnym podaniu środka kontrastowego
- HRCT (tomografia klatki piersiowej wysokiej rozdzielczości)
- zmiany typowe: zewnątrzzrazikowe guzki (w przypadku prosówki), wewnątrzzrazikowe guzki z linijnymi zacienieniami tworzyć (obraz „drzewa w pączkach” - typowy)
- Diagnostyka innych okolic w przypadku podejrzenia gruźlicy pozapłucnej (szczegółowe informacje można znaleźć w artykule: Gruźlica)
Diagnostyka bakteriologiczna
Pobieranie próbek
- Materiał do badania
- najczęściej:
- plwocina, wydzielina oskrzelowa lub tchawicza
- rzadziej:
- popłuczyny żołądkowe
- mocz
- płyn z jamy opłucnowej
- płyn mózgowo-rdzeniowy
- materiału z innych nakłuć lub biopsji, np. powiększonych węzłów chłonnych, moczowodu, jelita, stawów
- najczęściej:
- Posiew w kierunku prątków trzech próbek plwociny
- największą wartość diagnostyczną posiada próbka pobrana z pierwszej porannej plwociny
- pacjenci powinni odkrztusić śluz z oskrzeli (nie z jamy ustnej)
- próbki pobiera się przez 3 kolejne dni
- w razie potrzeby kaszel można indukować inhalacją hipertonicznego roztworu soli fizjologicznej (dostępne są roztwory 3% lub 4,8%)
Mikroskopia
- Szybka metoda
- Preparat bezpośredni
- W 50–80% przypadków gruźlicy, potwierdzonych dodatnim wynikiem hodowli, kwasooporne prątki można rozpoznać już w badaniu mikroskopowym próbki
- Brak możliwości bezpośredniego rozróżnienia między prątkiem gruźlicy a innymi prątkami - wymaga potwierdzenia w hodowli
Posiew bakteryjny
- Namnażanie się drobnoustrojów w płynnym podłożu hodowlanym (na pożywkach Löwensteina i Jensena lub nowoczesnych podłożach hodowlanych) można zaobserwować po upływie 7–21 dni4
- Wynik posiewu jest ujemny u 15–20% chorych na gruźlicę płuc 5, a u dzieci odsetek wyników fałszywie ujemnych jest często znacznie wyższy
- Możliwe określenie oporności prątków
- Okres inkubacji
- podłoża płynne: ≤6 tygodni
- podłoża stałe: ≤8 tygodni
Metody biologii molekularnej
- Zwykle stosuje się test amplifikacji kwasu nukleinowego (nucleic acid amplification test, NAT), głównie metodą PCR (Xpert MTB/RIF)
- Ze względu na możliwość wykrycia materiału genetycznego martwych prątków możliwy jest dodatni wynik u osoby po leczeniu gruźlicy. Z tego samego powodu nieprzydatna do monitorowania przebiegu choroby.
- Wysoka czułość i swoistość wykrywania prątków gruźlicy w plwocinie.
- w przypadku próbek mikroskopowo ujemnych czułość wynosi jednak jedynie 80–90%
- w każdym przypadku wymagane jest wykonanie posiewu bakteryjnego
- Metoda ta pozwala uzyskać wynik w ciągu godziny i przy jej użyciu można również wykryć oporność na ryfampicynę
- WHO wspiera finansowo stosowanie technologii PCR, aby rozpowszechnić ją również w krajach znajdujących się w niekorzystnej sytuacji ekonomicznej6
- Metody sekwencjonowania DNA do typowania molekularnego patogenu („DNA fingerprinting“) nie są rutynowo stosowane, ale mogą dostarczyć cennych informacji epidemiologicznych na temat łańcucha zakażeń
Źródła
Piśmiennictwo
- Podlasin RB, Thompson M. Gruźlica. W: Zasady opieki nad osobami zakażonymi HIV. Zalecenia PTN AIDS. 206-217. www.ptnaids.pl
- Stout JE, Wu Y, Ho CS et al. Evaluating latent tuberculosis infection diagnostics using latent class analysis. Thorax 2018; 73(11): 1062-1070. PMID: 29982223 PubMed
- Pai M, Zwerling A, Menzles D. Systematic review: T-cell-based assays for the diagnosis of latent tuberculosis infection: an update. Ann Intern Med 2008;149(3):177-84. www.ncbi.nlm.nih.gov
- Morgan MA, Horstmeier CD, DeYoung DR, Robers GD. Comparison study of a radiometric method (BACTEC) and conventional culture media for recovery of mycobacteria from smear-negative specimens. J Clin Microbiol 1983; 18: 384-88. PubMed
- American Thoracic Society, Centers for Disease Control and Prevention. Diagnostic standards and classification of tuberculosis in adults and children. Am J Respir Crit Care Med 2000; 161: 1376-95. PubMed
- WHO: Global tuberculosis report 2018, Stand 18.9.2018. www.who.int
- Korzeniewska-Koseła M, Iwona Grzelewska-Rzymowska I, Katarzyna Kruczak, Zofia Zwolska, Ewa Augustynowicz-Kopeć.K, et al. Gruźlica. Mp Data aktualizacji: 10 sierpnia 2023. www.mp.pl
Autorzy
- lek. Natalia Jagiełła, (redaktor)
- Sławomir Chlabicz; Dr hab. n. med. Prof.; specjalista medycyn rodzinnej; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (redaktor)
- Anna Grzeszczuk; Prof. dr hab. n. med.; specjalista chorób zakaźnych; Klinika Chorób Zakaźnych i Neuroinfekcji; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (recenzent)
- Thomas M. Heim, Dr n. med.; dziennikarz naukowy; Fryburg
