Badanie w kierunku utajonego zakażenia prątkiem gruźlicy (latent tuberculosis infection, LTBI)
- Obecnie do wykrywania gruźlicy utajonej służą tuberkulinowe próby skórne (THT) metodą Mendla-Mantoux i testy oparte na pomiarze uwalniania interferonu-gamma we krwi (Interferon-Gamma Release Assay, IGRA).
- U osób dorosłych zaleca się stosowanie wyłącznie testu IGRA z krwi.
- Ze względu na brak dowodów na wiarygodność testów IGRA u dzieci w wieku poniżej 5 lat, tuberkulinowa próba skórna (THT) pozostaje testem z wyboru w tej grupie wiekowej; u starszych dzieci można stosować oba testy.
- Pełna diagnostyka różnicowa obejmuje również:
- Wywiad lekarski i badanie fizykalne
- Diagnostykę obrazową, zwykle RTG klatki piersiowej w dwóch płaszczyznach
- Diagnostykę bakteriologiczną
- Diagnostyka w kierunku latentnego zakażenia Mycobacterium tuberculosis u osób wcześniej leczonych z powodu gruźlicy nie jest celowa. 1
- Więcej informacji na temat diagnostyki w podejrzeniu aktywnej gruźlicy można znaleźć w artykule Gruźlica.
Skórna próba tuberkulinowa (THT)
- Tuberkulinę podaje się w postaci wstrzyknięcia śródskórnego.
- Próba służy do:
- Wykrywania reakcji immunologicznej na patogeny gruźlicy u dzieci i młodzieży
- Mapowania zakażenia w środowisku osoby chorej na gruźlicę płuc
- W przypadku aktywnej choroby wynik jest często silnie dodatni.
- Trafność
- Mogą wystąpić zarówno wyniki fałszywie dodatnie, jak i fałszywie ujemne.
- Czułość: ok. 80 %
- Swoistość: ok. 70 %2
- Zwiększone ryzyko wyników fałszywie ujemnych:
- Zakażenie HIV w wyniku obniżonej odporności komórkowej
- Terapia lekami immunosupresyjnymi
- Wiek powyżej 60 lat
- Pacjenci z ciężką, zagrażającą życiu gruźlicą, np. gruźlicą prosówkową
- Nowo zakażone osoby w okresie inkubacji („faza przedalergiczna“)
- Zwiększone ryzyko wyników fałszywie dodatnich:
- Zakażenie prątkami niegruźliczymi (NTM)
- Wcześniejsze szczepienie BCG (Bacillus Calmette-Guérin)
- Mogą wystąpić zarówno wyniki fałszywie dodatnie, jak i fałszywie ujemne.
- Nowe zakażenie u dzieci
- Osoby niezaszczepione, u których wynik próby tuberkulinowej zmienia się z ujemnego na dodatni
- Reakcję dodatnią definiuje się jako stwardnienie (naciek) o średnicy >6 mm. W Polsce najczęściej za wynik dodatni przyjmuje się wielkość ≥10 mm.3
- Osoby z nadkażeniem, tj. zaszczepione BCG, u których występuje wyraźne nasilenie reakcji w próbie tuberkulinowej.
- Dodatnia reakcja przy wzroście nacieczenia o 4 mm lub więcej w stosunku do stosunkowo świeżej próby wyjściowej
- Podejrzenie gruźlicy
- Stwardnienie 6–14 mm uznaje się za łagodną lub słabą reakcję dodatnią.
- Skierowanie do specjalisty, jeśli pacjent był narażony na kontakt z patogenem, tzn. należy do grupy ryzyka.
- Stwardnienie ≥15 mm uznaje się za silną reakcję dodatnią.
- Skierowanie do specjalisty niezależnie od faktycznego narażenia lub przynależności do grupy ryzyka.
- Stwardnienie 6–14 mm uznaje się za łagodną lub słabą reakcję dodatnią.
Badanie IGRA z krwi (oznaczenie uwalniania interferonu gamma)
- Zasada testu immunologicznego
- Testy wykazują, iż układ odpornościowy miał już kontakt z patogenami gruźlicy.
- W tym celu limfocyty T inkubuje się z antygenami swoistymi dla Mycobacterium tuberculosis. Jeśli w odpowiedzi następuje uwalnianie interferonu gamma, wynik testu jest dodatni.
- Ilościowy pomiar uwalniania interferonu gamma
- IGRA wykrywa zakażenie M. tuberculosis zarówno w przypadku gruźlicy utajonej, jak i podejrzenia gruźlicy aktywnej.
- Testy wymagają tylko jednokrotnego kontaktu z lekarzem, dają jednoznaczną odpowiedź i wykazują wysoką swoistość (znacznie wyższą niż THT).
- Nie ma konieczności wykonywania THT przed badaniem IGRA.
- Komercyjnie dostępne są dwa badania krwi (wykrywanie interferonu metodą ELISA i ELISPOT), które w różny sposób mierzą nasilenie uwalniania przez limfocyty T interferonu gamma po ekspozycji na antygeny ESAT-6 i/lub CFP-10. Są to testy uwalniania interferonu gamma z wykorzystaniem antygenów kodowanych przez geny regionu RD1.
- Epidemiologia kliniczna
- Swoistość jest znacznie wyższa (98–99%) niż w przypadku próby tuberkulinowej, ponieważ IGRA różnicuje zakażenie M. tuberculosis complex z zakażeniem NTM (prątkami niegruźliczymi) oraz z kontaktem z antygenami szczepionki BCG.
- Czułość IGRA jest szacowana w badaniach na 70–97%, ale różni się w zależności od zastosowanego testu i badanej populacji4.
- Zakłada się, że czułość IGRA jest co najmniej tak wysoka jak THT.
Badania dodatkowe
Badania obrazowe
- Z reguły wystarczy RTG klatki piersiowej w dwóch płaszczyznach.
- Typowy obraz: nacieki w płacie górnym płuca, jamy, limfadenopatia w obrębie wnęki płuc oraz okolicy okołotchawiczej
- Jednak zmiany radiologiczne nie zawsze są wyraźne.
- RTG płuc należy wykonywać również u kobiet w ciąży z podejrzeniem gruźlicy, np. w przypadku dodatniego wyniku testu IGRA.
- W zależności od oceny ryzyka uzasadnione może być wykonanie zdjęcia rentgenowskiego dopiero po zakończeniu organogenezy, tj. po I trymestrze ciąży.
- TK klatki piersiowej w szczególnych sytuacjach, np.
- Złożona diagnostyka różnicowa
- Niejasne wyniki badań rentgenowskich klatki piersiowej
- Diagnostyka innych okolic ciała w przypadku podejrzenia gruźlicy pozapłucnej (szczegółowe informacje można znaleźć w artykule Gruźlica).
Diagnostyka bakteriologiczna
Pobieranie próbek
- Materiał do badania
- Najczęściej:
- Plwociny, wydzielina oskrzelowa lub tchawicza
- W przypadku uzasadnionego podejrzenia pobranie próbki:
- Soku żołądkowego
- Moczu
- Płynu z jamy opłucnowej
- Płynu mózgowo-rdzeniowego
- Materiału z innych nakłuć lub biopsji, np. powiększonych węzłów chłonnych, moczowodu, jelita, stawów
- Najczęściej:
- Posiew w kierunku prątków trzech próbek plwociny
- Największą wartość diagnostyczną posiada próbka pobrana z pierwszego porannego odkrztuszenia. Pacjenci powinni odkrztusić śluz z oskrzeli (nie z jamy ustnej).
- Próbki pobiera się przez 3 kolejne dni.
- W razie potrzeby kaszel można indukować inhalacją hipertonicznego roztworu soli fizjologicznej (dostępne są roztwory 3% lub 4,8%).
- Uwaga: należy stosować ochronę przed zakażeniem w wyniku wdychania aerozoli!
- Stosować sterylny, szczelny pojemnik jednorazowego użytku bez dodatków.
- Największą wartość diagnostyczną posiada próbka pobrana z pierwszego porannego odkrztuszenia. Pacjenci powinni odkrztusić śluz z oskrzeli (nie z jamy ustnej).
Mikroskopia
- Szybka metoda
- Preparat bezpośredni
- W 50–80% przypadków gruźlicy, potwierdzonych dodatnim wynikiem hodowli, kwasooporne prątki można rozpoznać już w badaniu mikroskopowym próbki.
- Brak możliwości rozróżnienia między prątkiem gruźlicy a innymi prątkami
Posiew bakteryjny
- Namnażanie się drobnoustrojów w płynnym podłożu hodowlanym można zaobserwować po upływie 7–21 dni5.
- Wynik posiewu jest ujemny u 15–20% chorych na gruźlicę płuc 6, a u dzieci odsetek wyników fałszywie ujemnych jest często znacznie wyższy.
- Istotne znaczenie ma określenie oporności.
- Okres inkubacji
- Podłoża płynne: ≤6 tygodni
- Podłoża stałe: ≤8 tygodni
Diagnostyka metodami biologii molekularnej
- Zwykle stosuje się test amplifikacji kwasu nukleinowego (nucleic acid amplification test, NAT), głównie metodą PCR (Xpert MTB/RIF).
- Wysoka czułość i swoistość wykrywania prątków gruźlicy w plwocinie.
- W przypadku próbek mikroskopowo ujemnych czułość wynosi jednak jedynie 80–90%. W każdym przypadku wymagane jest wykonanie posiewu bakteryjnego.
- Metoda ta pozwala uzyskać wynik w ciągu godziny i przy jej użyciu można również wykryć oporność na ryfampicynę. Umożliwia to wcześniejsze i lepiej ukierunkowane leczenie.
- Badanie jest wskazane w ramach szybkiej diagnostyki w przypadku:
- Uzasadnionego podejrzenia i ujemnego wyniku badania bezpośredniego plwociny u szczególnie zagrożonych pacjentów, np. pacjentów z AIDS, małych dzieci
- Poważnych chorób, np. choroby uogólnionej lub gruźliczego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych
- Nieprzydatne do monitorowania przebiegu choroby ze względu na dodatnie wyniki z powodu przedłużonej obecności pozostałości DNA i RNA zabitych bakterii.
- WHO wspiera finansowo stosowanie technologii PCR, aby rozpowszechnić ją również w krajach znajdujących się w niekorzystnej sytuacji ekonomicznej7.
- Metody sekwencjonowania DNA do typowania molekularnego patogenu („DNA fingerprinting“) nie są rutynowo stosowane, ale mogą dostarczyć cennych informacji epidemiologicznych na temat łańcucha zakażeń.
Źródła
Piśmiennictwo
- Podlasin RB, Thompson M. Gruźlica. W: Zasady opieki nad osobami zakażonymi HIV. Zalecenia PTN AIDS. 206-217. www.ptnaids.pl
- Stout JE, Wu Y, Ho CS et al. Evaluating latent tuberculosis infection diagnostics using latent class analysis. Thorax 2018; 73(11): 1062-1070. PMID: 29982223 PubMed
- Korzeniewska-Koseła M, Iwona Grzelewska-Rzymowska I, Katarzyna Kruczak, Zofia Zwolska, Ewa Augustynowicz-Kopeć.K, et al. Gruźlica. Mp Data aktualizacji: 10 sierpnia 2023. www.mp.pl
- Pai M, Zwerling A, Menzles D. Systematic review: T-cell-based assays for the diagnosis of latent tuberculosis infection: an update. Ann Intern Med 2008;149(3):177-84. www.ncbi.nlm.nih.gov
- Morgan MA, Horstmeier CD, DeYoung DR, Robers GD. Comparison study of a radiometric method (BACTEC) and conventional culture media for recovery of mycobacteria from smear-negative specimens. J Clin Microbiol 1983; 18: 384-88. PubMed
- American Thoracic Society, Centers for Disease Control and Prevention. Diagnostic standards and classification of tuberculosis in adults and children. Am J Respir Crit Care Med 2000; 161: 1376-95. PubMed
- WHO: Global tuberculosis report 2018, Stand 18.9.2018. www.who.int
Autorzy
- Sławomir Chlabicz; Dr hab. n. med. Prof.; specjalista medycyn rodzinnej; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (redaktor)
- Anna Grzeszczuk; Prof. dr hab. n. med.; specjalista chorób zakaźnych; Klinika Chorób Zakaźnych i Neuroinfekcji; Uniwersytet Medyczny w Białymstoku (recenzent)
- Thomas M. Heim, Dr n. med.; dziennikarz naukowy; Fryburg